蛋白制備

1. 獲得目的基因,克隆或合成目的基因  

2. 載體構建:,PCR方法:以含目的基因的克隆質粒為模板，按基因序列設計一對引物（在上游和下游引物分別引入不同的酶切位點)，PCR循環獲得所需基因片段。②通過RT-PCR方法:用TRIzol法從細胞或組織中提取總RNA，以mRNA為模板，逆轉錄形成 cDNA 第一鏈，以逆轉錄產物為模板進行PCR循環獲得產物.構建重組表達載體載體酶切:將表達質粒用限制性內切酶(同引物的酶切位點)進行雙酶切，酶切產物行瓊脂糖電泳后，用膠回收Kit或凍融法回收載體大片段。PCR產物雙酶切后回收，在T4DNA連接酶作用下連接入載體。獲得含重組表達質粒的表達菌種,將連接產物轉化大腸桿菌DH5α，根據重組載體的標志(抗Amp或藍白斑)作篩選，挑取單斑，堿裂解法小量抽提質粒，雙酶切初步鑒定。測序驗證目的基因的插入方向及閱讀框架均正確，進入下步操作。否則應篩選更多克隆，重復亞克隆或亞克隆至不同酶切位點。以此重組質粒DNA轉化表達宿主菌的感受態細胞5.氯霉素酰基轉移酶重組蛋白的誘導。②按1:50或1:100 的比例稀釋過夜菌，一般轉接1 mL過夜培養物于100 mL (含100 ug/mL氨芐青霉素)LB液體培養基中，37℃震蕩培養至OD600 = 0.6-0.8(最好0.6，大約需3 h)。取10 ul樣品用于SDS-PAGE分析。接種含有重組氯霉素酰基轉移酶蛋白的大腸桿菌BL21菌株于5 mLLB液體培養基中(含100 ug/mL氨芐青霉素)，37℃震蕩培養過夜。

②按1:50或1:100 的比例稀釋過夜菌，一般轉接1 mL過夜培養物于100 mL (含100 ug/mL氨芐青霉素)LB液體培養基中，37℃震蕩培養至OD600 = 0.6-0.8(最好0.6，大約需3 h)。取10 ul樣品用于SDS-PAGE分析。
③對照組不加誘導劑，實驗組加入IPTG至終濃度0.5 mmol/l，37℃繼續培養1-3 h.
12 000 rpm離心10 min，棄上清，菌體沉淀保存于-20℃或-70℃冰箱中。
6.氯霆素酰基轉移酶重組蛋白的分離、純化
NTA層析柱的準備:在層析柱中加入1 mLNTA 介質，并分別用8 mL去離子水，8 mL上樣緩沖液洗滌。
②重組蛋白的變性裂解:在冰浴中凍融菌體沉淀，加入5 mL上樣緩沖液，用吸管抽吸重懸，超聲波破裂菌體，用振蕩器等輕柔的混勻樣品60 min，4C 12000 rpm離心 30 min，將上清吸至一個干凈的容器中，并棄沉淀。取10ul上清樣品用于SDS-PAGE分析。

3. 蛋白表達與純化③對照組不加誘導劑，實驗組加入IPTG至終濃度0.5 mmol/l，37℃繼續培養1-3 h.12 000 rpm離心10 min，棄上清，菌體沉淀保存于-20℃或-70℃冰箱中。6.氯霆素酰基轉移酶重組蛋白的分離、純化NTA層析柱的準備:在層析柱中加入1 mLNTA 介質，并分別用8 mL去離子水，8 mL上樣緩沖液洗滌。

4. 蛋白的大量表達與純化②重組蛋白的變性裂解:在冰浴中凍融菌體沉淀，加入5 mL上樣緩沖液，用吸管抽吸重懸，超聲波破裂菌體，用振蕩器等輕柔的混勻樣品60 min，4C 12000 rpm離心 30 min，將上清吸至一個干凈的容器中，并棄沉淀。取10ul上清樣品用于SDS-PAGE分析。

蛋白制備

1.His、GST、MBP等標簽多種表達方式同時進行，確保獲得目的蛋白

2.保證蛋白為普通緩沖可溶

3.純化的蛋白經過ELISA，Western-blot，或者其它生物活性驗證

4.可提供詳細表達純化條件，實驗數據以及菌株